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Description
La coquille peut atteindre 150 à 200 g en trois à quatre ans. Cône régulier chez les jeunes, la base de sa coquille s'évase en vieillissant. Le troca vit la nuit. Il fuit les fortes luminosités et se trouve donc parfaitement à l'aise sur les platiers coralliens dont les trous offrent de nombreuses cachettes. Les trocas sont abondants jusqu'à une profondeur d'environ dix mètres. Les jeunes préfèrent la partie côtière du platier, les vieux la dalle de récif proche des brisants. Plus lourds, plus puissants, ils résistent mieux aux vagues. En Nouvelle-Calédonie, les scientifiques ont remarqué la présence de trocas sur les éboulis rocheux côtiers. Mais l'absence de corail mort à cet endroit fait que, faute de calcaire, la croissance de leur coquille est faible. Pour se déplacer, le troca rampe sur un pied très large qui lui permet d'adhérer au platier et de résister à l'assaut de la houle. Pour brouter le corail mort à la recherche des algues dont il se nourrit, le troca utilise sa radula, une sorte de râpe logée dans sa bouche et qui comporte 150 dents très dures. Sur son pied est fixé un opercule corné qui ferme la coquille.
La coquille du troca, colorée de taches rouges irrégulières à l'extérieur, est très épaisse. Quand l'animal se contracte, l'opercule bouche complètement l'ouverture. Le troca est ainsi protégé des prédateurs (les toutoutes et les tritons adorent les jeunes trocas). La coquille est souvent recouverte d'une couche de calcaire blanchâtre secrétée par des algues calcaires. À l'intérieur, la coquille est nacrée. La nacre est formée par une accumulation de très fins dépôts de cristaux de calcite et de matière organique. La présence de milliers de microbulles d'air provoque une décomposition de la lumière. Comme l'arc-en-ciel, créé par de très fines gouttes de pluie, les microbulles d'air donnent à la coquille son aspect irisé.
La croissance des trocas dépend de leur environnement, de la température de l'eau et de la qualité de la nourriture disponible.
Il existe des trocas mâles et femelles. Pour les distinguer, il faut casser la coquille et faire apparaître la gonade (glande sexuelle) qui, à maturité, est de couleur vert foncé chez la femelle et blanc laiteux chez le mâle. Deux à trois jours avant la ponte, l'activité nocturne des trocas augmente. La fécondation se fait dans l'eau, la nuit, à des périodes liées aux phases de la lune. En Micronésie et en Australie, elle a lieu toute l'année, quelques jours avant ou après la nouvelle ou la pleine lune. En Nouvelle-Calédonie, elle se déroule durant les mois chauds (octobre à avril). Les larves ne s'alimentent pas, elles se développent sur leurs propres réserves. À la fin de leur vie planctonique, elles se laissent tomber au fond de la mer et se métamorphosent. L'animal commence à se tordre et la coquille à se développer.

Habitat
Récifs coralliens, plus précisément les platiers. On trouve des trocas dans la ceinture inter-tropicale comprise entre les îles Andaman de l'océan Indien et les îles Fidji et Wallis du Pacifique. Depuis 1927, de nombreuses transplantations ont été réalisées. Elles ont permis d'étendre très loin vers l'est l'habitat naturel des trocas.

Législations
La pêche aux trocas est ouverte toute l'année. Pour la pratiquer à titre commercial, il faut être titulaire d'une autorisation spéciale de pêche aux trocas. Demeurent interdits, en tout temps, le transport et la commercialisation des trocas dont le plus grand diamètre est inférieur à 9 cm.

Synonyme
Trochus niloticus (Linnaeus, 1767)

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Tectus niloticus is a species of sea snail, a marine gastropod mollusk in the family Turbinidae, the turban snails.

This species is a very large (up to 13 cm) Indo-Pacific top shell, which has a very thick inner layer of nacre. This species is commercially exploited to make mother of pearl buttons, mother of pearl beads, pendants and so on. In 2006, for example, the sole commercial export of the Wallis and Futuna Islands was 19 tons of Trochus shells valued at US$122,000.

Aquaculture
Tectus niloticus is a highly sought after resource in the Pacific and Indo-Pacific regions. This has resulted in the species being over-harvested. By 2007 the Solomon Islands, Fiji and Papua New Guinea have the most depleted stocks with four surveyed sites in the Solomon Islands in 2006 averaging a density of 11 trochus ha^-1. Releasing hatchery-reared juveniles is an option to replenish reduced wild stocks. Methods of culture are still under assessment and development where experiments have been conducted in Vanuatu;, Australia, Indonesia and Vietnam. Cage-based cultures have proven effective because they allow control of food and predators which contribute greatly to the growth and survival of juveniles;. Other benefits of sea cages include lower cost, easy to construct and transport, manageability and the advantage of using existing water bodies.
Hatchery-reared individuals are usually lab-spawned and raised. Broodstock can be collected from local wild populations and from sites which juveniles are to be released. Spawning is usually induced by heat shock under laboratory conditions;. Larvae are grown on coral rubble and shell grit and fed with benthic diatoms. (Nitzschia spp. and Navicula spp.). Juveniles used in cage experiments may have an initial size of 8mm shell diameter. Other experiments may start at 15mm basal shell width.
The release size of cultured juveniles is important to ensure its survival or response to predators where the larger the individual the less vulnerable it is to predation. A release size of 35mm (basal shell width, BSW) is recommended. The period of growth to this suitable size is about 6 months under optimum conditions. However producing large individuals is costly. Alternatives such as high density releases of small juveniles and over large areas are less expensive and solutions to reduce predation pressure from fish species such as Choerodon cyanodus and Diodontidae and crustaceans such as Mancinella tubercosa and Calappa hepatica. Hatchery and transit conditions are also factors that may affect the vulnerability of juveniles to predators. It is recommended animals are reared on natural substrata before release.
The growth of the cultured individuals can depend on the density of juveniles in the cages and the likely causes are competition for food and space. An initial density of 100 trochus m-2 achieves a basal diameter of 10-20mm which can then be reduced to 50 trochus m-2 to yield basal diameters 25-40mm. Beyond this range a density of less than 10 trochus m-2 is recommended. Seaweed and algae are the main food and these grow on the dead corals and rocks which may occur naturally at the cultured sites or collected from adjacent areas and placed at the bottom of the cages. It is recommended that for cages with juveniles sized >30mm, these seaweed-covered rocks should be replaced 2 to 3 times a month and cover over 50% of the area. Cage design is important in preventing escape of juveniles and entry of predators and also shading of algal and seaweed on rocks. Recommended designs include cages with 8x8mm plastic mesh and an aluminium frame. Steel reef, plastic reef and plastic floating cages have proven ineffective as steel reef cages allowed high mortality from predator entry and plastic cages induced shading of the rocks algae and seaweed are attached to which results in low productivity. Suitable locations for reef cages are sand and rubble bottom reef bases exposed to less wave action [6] or fore-flat zones which are 10m behind the reef crest with water depths of 0 to 2.5m during spring-tides. Shifting sand and sediment deposition areas may smother foraging surfaces and need to be avoided when allocating cages;. Wind-ward sections of the reef flat are considered suitable sites. Floating cages require frequent cleaning to remove fouling species and allow high water flow and/ or nutrient flux for high algal biomass and quality. Other environmental factors such as water temperature and salinity can have seasonal and episodic effects on the growth of the juveniles.
Suitable release sites of trochus juveniles into the wild include unconsolidated coral rubble and areas where predators are absent. It is common that juveniles are placed upright inside a cover such as a reef crevice; or under macroalgae as a means of predator protection.
The success of released individuals in contributing to wild populations can be measured by the mark and recapture method. However the validity of this method may be limited by factors such as detection methods, predation, escape of juveniles, translocation of juveniles by strong currents or detection may simply be not carried out.